Q1：如何準備透析膜管？
透析膜管的準備因膜管材質和生產工藝的差別而有所不同。注意，我們不推薦煮沸處理，因其可能損壞膜管并改變膜孔徑。
Q2：透析的原理是什么？一般需要多長時間才能完成？
透析是指溶質在濃度梯度的驅使下，選擇性擴散通過半透膜，從而達到大/小分子分離，膜兩側濃度平衡，即小顆粒的溶質通過膜，而大分子物質不能通過，被截留在膜另一邊。
如果將樣品置于透析膜管內，通過置換膜管外部的透析緩沖液，可將小顆粒物質**，從而達到純化大分子物質的目的。一般來說，**之內置換3-5次緩沖液，然后在室溫條件下，放在攪拌臺上隔夜透析，即可達到高效的透析結果。標準的透析操作一般需要16-24小時。許多因素會影響透析效率，包括：擴散系數、pH值、溫度、時間、物質濃度、樣品體積、透析緩沖液體積、透析緩沖液的置換次數、膜表面積、膜厚度、分子帶電荷及緩沖液攪拌速率。
Q3：透析一個樣品需要多少體積的透析緩沖液？緩沖液置換頻率怎么安排？
透析緩沖液的體積越大，小分子擴散的驅動力越大。我們一般推薦緩沖液和樣品的體積比為100:1。當擴散速率降低，膜兩側溶液趨于平衡時，通過置換緩沖液，可維持小分子擴散驅動力和透析速率。我們一般推薦在12-24小時內，置換緩沖液2到3次，具體安排如下：
**次緩沖液置換：透析開始后2-3小時
**次緩沖液置換：透析開始后4-5小時
*后一次緩沖液置換：透析隔夜之前
Q4：如何選擇正確的截留分子量（MWCO）？
截留分子量應該竟可能的大，以使透析速率*大化。但是，為了獲得*大的樣品回收率，選擇的截留分子量應至少為需純化的大分子物質分子量的一半。對于需對幾種分子進行分離的應用，分子之間的分子量差至少為5倍，才能完成有效的膜透析。若不能滿足分子量差的要求，可能需要使用其它的分離技術，如色譜方法或切向流過濾。
Q5：哪種膜的蛋白質結合率*低？
每種膜對不同的分子具有不同的親和性。對于球狀蛋白，相對的結合親和性由低到高為CE< RC
Q6：怎樣為膜管選擇合適大小的膜夾？
標準RC膜（Spectra/Por 1-7）和生物技術級RC膜由柔韌的再生纖維素聚合物制造，可使用任何一種透析膜夾密封。生物技術級CE & PVDF膜由相對剛性的聚合物制造，需要使用相對溫和的通用膜夾。鑒于通用膜夾對于所有類型的膜管都能起到很好的密封作用，如不確定選擇哪種膜夾合適，使用通用膜夾即可。標準膜夾一般只用于標準級RC膜管。
膜夾的密封寬度一般需比膜管的扁平寬度長4-10 mm。通用膜夾的*小密封寬度為50 mm。對于所有扁平寬度規格的膜管，均有相應的膜夾可供選擇。