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透析袋说明|介绍
透析袋说明|介绍
透析只需要使用专用的半透膜即可完成。通常是将半透膜制成袋状，就叫做透析袋。
   自Thomas Graham1861年发明透析方法至今已有一百多年。透析已成为生物化学实验室*简便*常用的分离纯化技术之一。在生物大分子的制备过程中，除盐、除少量有机溶剂、除去生物小分子杂质和浓缩样品等都要用到透析的技术。
  透析只需要使用专用的半透膜即可完成。通常是将半透膜制成袋状，将生物大分子样品溶液置入袋内，将此透析袋浸入水或缓冲液中，样品溶液中的大分子量的生物大分子被截留在袋内，而盐和小分子物质不断扩散透析到袋外，直到袋内外两边的浓度达到平衡为止。保留在透析袋内未透析出的样品溶液称为“保留液”，袋（膜）外的溶液称为“渗出液”或“透析液”。
  透析的动力是扩散压，扩散压是由横跨膜两边的浓度梯度形成的。透析的速度反比于膜的厚度，正比于欲透析的小分子溶质在膜内外两边的浓度梯度，还正比于膜的面积和温度，通常是4℃透析，升高温度可加快透析速度。
   透析膜可用动物膜和玻璃纸等，但用的*多的还是用纤维素制成的透析膜，目前常用的是美国Union Carbide（联合碳化物公司）生产的各种尺寸的透析管，截留分子量MwCO（即留在透析袋内的生物大分子的*小分子量，缩写为MwCO）通常为1万左右。
   商品透析袋制成管状，其扁平宽度为10 mm～77mm不等。为防干裂，出厂时都用10％的甘油处理过，并含有极微量的硫化物、重金属和一些具有紫外吸收的杂质，它们对蛋白质和其它生物活性物质有害，用前必须除去。可先用50％乙醇煮沸1小时，再依次用50％乙醇、0.01mol/L碳酸氢钠和0.001 mol/LEDTA溶液洗涤，*后用蒸馏水冲洗即可使用。实验证明，50％乙醇处理对除去具有紫外吸收的杂质特别有效。使用后的透析袋洗净后可存于4℃蒸馏水中，若长时间不用，可加少量NaN2，以防长菌。洗净凉干的透析袋弯折时易裂口，用时必须仔细检查，不漏时方可重复使用。
  新透析袋如不作如上的特殊处理，则可用沸水煮五至十分钟，再用蒸馏水洗净，即可使用。使用时，一端用橡皮筋或线绳扎紧，也可以使用特制的透析袋夹夹紧，由另一端灌满水，用手指稍加压，检查不漏，方可装入待透析液，通常要留三分之一至一半的空间，以防透析过程中，透析的小分子量较大时，袋外的水和缓冲液过量进入袋内将袋涨破。含盐量很高的蛋白质溶液透析过夜时，体积增加50％是正常的。为了加快透析速度，除多次更换透析液外，还可使用磁子搅拌。透析的容器要大一些，可以使用大烧杯、大量筒和塑料桶。小量体积溶液的透析，可在袋内放一截两头烧园的玻璃棒或两端封口的玻璃管，以使透析袋沉入液面以下。
   检查透析效果的方法是：用1％ BaCl2检查(NH4)2SO4，用1％ AgNO3检查NaCl、KCl等。
  为了提高透析效率，还可以使用各种透析装置。使用者也可以自行设计与制作各种简易的透析装置。  
 根据个人使用经验，建议使用透析袋效果比较好，还有具体需要什么规格的要看你的目的蛋白量有多大，才能决定使用多大的截留分子量的透析袋，一般截留量越大价格也就会越高，还有就是透析袋宽度的选择，要看你的实验一次需要透析多少量来决定。
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